细菌RNAout
产品及特点 本产品是在天净沙动物RNAout基础上根据细菌提取的具体情况改良而得。它基于异硫氰酸胍/酚/提取RNA原理,可用于包括E.coli、Bacillus subtilis和Staphylococcus aureus等各种常见的革氏阴性和阳性细菌。
1. 操作简单快速,只要十分钟左右,可以全在室温下进行。
2. 所得RNA质量高,OD260/OD280一般在1.9,不含基因DNA污染。
3. 灵敏度高,可以从一个菌落中提取到普通电泳能够检测到的总RNA。
4. 性价比高于进口同类产品。
规格及成分 成份 100次包装 250次包装
细菌RNAout 100 mL 250 mL
使用手册 1份 1份
运输及保存 常温运输,4℃保存,有效期一年。
自备试剂 ,异丙醇,75%乙醇,RNA溶解液
使用方法 1 在1.5 mL塑料离心管中离心收集0.2-1.5 mL新鲜细菌(注意:由于细菌RNA半衰期十分短,所以,必须使用鲜细菌),吸尽液体培养基,加入1 mL细菌RNAOUT并用枪充分吹打,确保细菌全部裂解,没有块状物。如果使用菌落,则用接种环小心将其转移到装有1 mL细菌RNAOUT的1.5 m塑料离心管中,用移液枪吹打均匀。在细菌数较少时,建议使用天泽基因的助沉剂RNADOWN以提高RNA回收率。
2 加入0.2 mL,在振荡器上充分振荡混均30秒(必须将管底的液体振荡起来,否则不能有效将DNA打断和去除蛋白质)。
3 12000-15000 g室温离心3分钟。上清液无色,下层液呈篮色,中间为蛋白质。小心将上清液转移到另一干净1.5 m塑料离心管中,上清液体积约为0.6 mL。为避免触及中间层的DNA和蛋白质,建议分小量多次吸取,并且只取0.5 mL,留0.1 mL左右。当细菌数量较少时,中间层十分松散,上清时很容易吸到下层有机相,需要更加小心。
4 在上清液中加入等体积的异丙醇,振荡器上振荡混均30秒。
5 12000-15000室温离心3-10分钟,RNA将在管底侧面形成沉淀。
6 小心吸弃上清液,注意不要吸弃RNA沉淀。
7 在离心管中加入1mL 75%乙醇,振荡器上振荡混均30秒。
8 12000-15000 g室温离心1分钟。
9 小心吸弃上清液,注意不要吸弃RNA沉淀。
10 重复第8到第10步一次。
11 短暂快速离心,用移液枪小心吸弃残留液(约50 uL)。
12 短暂放1-2分钟后加入适量RNA溶解液使RNA沉淀溶解,可以立即使用或存放于-80℃长期保存。
13 RNA完整性的电泳检测:
如果需要做Northern杂交,强烈建议用户使用甲醛变性胶进行RNA电泳,因为非变性胶不能分离所有的RNA分子(BioTechniques,28:414,2000)。如果是简单检测,可以使用TAE或天泽基因的SuperBuffer-2 DNA/RNA两用快速电泳液,但文献报道必须使用变性上样液(BioTechniques,9:558,1990)。普通DNA上样液不含变性剂,也没经过去RNase处理,所以不要使用。
尤其需要注意的是不要使用TBE进行RNA电泳,因为TBE所含硼酸是研究多糖的经典方法----硼酸络合法中的关键成分,硼酸通过与RNA核糖中的羟基发生络合反应,形成RNA分子内或RNA分子间的络合复合物,使同样长度的RNA具有不同的泳动速度,电泳条带弥散,同时有大的RNA络合复合物迟留在加样孔中(一般会误以为是基因组DNA污染)。RNA分子内或RNA分子间的络合物的形成的多少和比例又与硼酸与RNA的数量比例有关,而RNA样品中污染的其他多糖(如植物中提取的RNA)也会参与此反应,使硼酸对RNA电泳的影响更复杂,所以TBE对RNA电泳的影响没有规律性和重复性。有的样品可以使用有的又不行,是避免使用。
由于细菌细胞中70-80%的RNA为rRNA,后者又由23S (约3700 nt),16S (约1700 nt)和5S (约100 nt)三种组成,所以变性胶电泳后应该在UV下看见三条清晰的rRNA带。由于核酸长度与结合EB的数量成正比(当然还与RNA的二级结构有关,双链部分结合能力比单链部分强),所以23S rRNA条带的荧光强度一般比16S rRNA条带的荧光强度强2倍。如果这两条rRNA带不清晰或比例小于此范围则表示RNA有降解(因为大的RNA被酶降解的可能更大)。
14 RNA产量产率测定:
将5-10 μL RNA溶于TE缓冲液中(pH7.5-8.2之间)检测其在OD260的光吸收。通过光吸收可以得出RNA浓度(1 OD260的RNA=40 μg/mL),进而计算出RNA的产量和产率。
注意不要将RNA稀释在DEPC水中检测OD260和OD280,否则光吸收比在TE中测得的低10%-15%,因为核酸光吸收跟溶液pH相关,而DEPC水中的DEPC高压分解后产生的CO2 与水反应生成碳酸,使溶液pH降低进而降低RNA的光吸收。
15 RNA纯度测定:
无污染的总RNA的OD260/OD280一般在1.8-2.1之间(具体数值与其碱基组成和溶液成分等多种因素有关),OD260/OD230一般在2.0-2.3之间,如果低于或高于此范围则分别表示样品可能有蛋白质或多糖的污染,但一般不影响RT-PCR等反应。蛋白质污染可以通过酚/抽提一次然后酒精沉淀去除,DNA和多糖污染可以分别用天泽基因的DNA Erasol 和PS Erasol去除。
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